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文檔簡介
1、目的:
以骨髓間充質干細胞(BMSCs)作為種子細胞,將攜帶低氧誘導因子-1α(HIF-1α)的慢病毒感染BMSCs后與納米羥基磷灰石人工骨材料(Nano-HA)體外復合培養(yǎng),植入兔橈骨骨缺損模型,觀察HIF-1α對骨缺損的修復作用。
方法:
用已構建成功的HIF-1α慢病毒表達質粒和包裝質粒共轉染293Ta細胞,包裝出慢病毒并測出病毒滴度。取兔脛骨的骨髓,使用全骨髓貼壁篩選法結合密度梯度離心法分離培養(yǎng)BM
2、SCs,通過形態(tài)學觀察及流式細胞儀檢測細胞表面標記物CD90、CD105、CD34、CD45對BMSCs進行鑒定。將攜帶HIF-1α慢病毒感染BMSCs,倒置熒光顯微鏡下觀察感染效率。將感染攜帶HIF-1α慢病毒后的BMSCs與Nano-HA共培養(yǎng)得到HIF-1α-eGFP/BMSCs/Nano-HA人工骨材料,電鏡掃描法檢測BMSCs在Nano-HA支架的復合情況,沉淀法檢測細胞在支架上的黏附率,CCK-8法檢測支架上細胞增殖效率。將
3、體外復合培養(yǎng)后的人工骨材料植入兔橈骨骨缺損模型,使用新西蘭大白兔40只,隨機分為4組,每組10只:A組植入轉染HIF-1α的BMSCs與Nano-HA復合培養(yǎng)后的人工骨材料(HIF-1α-eGFP/BMSCs/Nano-HA組)、B組植入BMSCs與Nano-HA復合培養(yǎng)后的人工骨材料(BMSCs/Nano-HA組)、C組植入Nano-HA人工骨材料(Nano-HA組),D組不植入任何材料(空白組)。于手術后第4,8,12周分別檢測兔橈
4、骨大體標本、X光、組織切片、生物力學性能并進行統(tǒng)計學分析,觀察比較橈骨缺損的愈合情況。
結果:
1、將攜帶HIF-1α慢病毒表達質粒轉染293Ta細胞48小時后,收取病毒后,用孔稀釋計數(shù)法計算出病毒滴度為5.0×107TU/ml。用流式細胞儀對細胞表面標記物CD90、CD105和CD34、CD45進行檢測,CD90、CD105陽性率為99.3%,CD34、CD45為陰性。
2、BMSCs與Nano-HA共培
5、養(yǎng):沉淀法檢測轉染HIF-1α后的BMSCs對Nano-HA材料黏附能力隨時間增加而增強;CCK-8法檢測轉染HIF-1α基因后的BMSCs增殖速率變快,Nano-HA材料對BMSCs的增殖無明顯影響;電鏡掃描結果提示細胞在材料表面上生長良好,偽足伸展充分,并且相互連接成片。
3、動物實驗:在術后第4、8、12周分別對各組大體標本、X線、組織切片、生物力學性能進行檢測,發(fā)現(xiàn)A組HIF-1α-eGFP/BMSCs/Nano-HA
6、復合人工骨、B組BMSCs/Nano-HA復合人工骨和C組Nano-HA人工骨均可促進骨缺損修復,但A組HIF-1α-eGFP/BMSCs/Nano-HA復合人工骨組的新骨形成量大,骨缺損修復能力明顯優(yōu)于后兩者,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。
結論:
BMSCs作為骨組織工程種子細胞參與成骨,HIF-1α基因促進BMSCs成骨、成血管分化,從而增強新生骨組織的形成能力,更有效地修復骨缺損,Nano-HA具有良好的
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