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1、N-乙酰神經(jīng)氨酸(N-acetylneuraminic acid,NeuAc)及其衍生物參與許多生理和病理過程,在食品、藥品和保健品行業(yè)都有極大的應(yīng)用潛力。傳統(tǒng)的天然產(chǎn)物提取法過程繁瑣、效率低下,難以滿足市場需求。現(xiàn)階段,酶法合成和全細胞生物催化是生產(chǎn)NeuAc的主要途徑。但這兩種方法都需要添加丙酮酸和GlcNAc作為前體物,價格比較昂貴。 利用葡萄糖或其它廉價碳源直接發(fā)酵生產(chǎn)NeuAc十分具有吸引力,因為該過程可以一步合成N
2、euAc而不需要添加任何直接前體物。前期實驗中,在大腸桿菌中構(gòu)建了一條葡萄糖起始的NeuAc合成途徑(DN5/pNnsGM)。菌株發(fā)酵時中間產(chǎn)物GlcNAc大量積累,ManNAc和丙酮酸也有一定量積累。通過在發(fā)酵過程中外源添加丙酮酸,NeuAc產(chǎn)量提高了104.6%,這說明相對于ManNAc來說,丙酮酸是不足的。于是本論文在一株實驗室已有的丙酮酸高產(chǎn)菌株中表達了NeuAc合成途徑,但未能實現(xiàn)NeuAc積累;本論文嘗試在DN5中過表達gl
3、k增加丙酮酸供給,結(jié)果影響不大。 接下來,本論文以大腸桿菌K1來源的NeuAc合酶neuB替換掉pNnsGM中的nanA,希望通過最后一步反應(yīng)的單向性增加產(chǎn)物合成。DN5/pB發(fā)酵積累1.75g/L NeuAc,較DN5/pNnsGM提高了1.55倍,中間產(chǎn)物GlcNAc和ManNAc濃度提高了一倍多,而丙酮酸的濃度降低。為降低乙酸積累,本論文在DN5基礎(chǔ)上敲除了磷酸乙酰轉(zhuǎn)移酶基因pta得到DN6菌株,發(fā)酵DN6/pB時,乙酸
4、積累由4.62g/L減少到1.55g/L。 為提高細胞內(nèi)PEP的水平,本論文在DN6基礎(chǔ)上敲除了葡萄糖專一性的磷酸轉(zhuǎn)移酶系統(tǒng)中膜整合蛋白ⅡCBGlc編碼基因(ptsG)構(gòu)建了DN7菌株以阻斷PTS系統(tǒng),減少PEP消耗。DN7/pB發(fā)酵48h積累1.48g/L NeuAc,較DN5/pB緩慢;中間產(chǎn)物ManNAc濃度稍高(2.63vs.1.17g/L),沒有檢測到丙酮酸。 隨后本論文敲除了編碼PEP羧化酶的ppc基因,
5、得到重組菌株DN8。DN8/pB發(fā)酵70h積累2.0g/L NeuAc,葡萄糖消耗速率僅為0.26g/L/h,生物量積累明顯受到影響。這可能是因為ppc編碼的PEP羧化酶是大腸桿菌C4回補途徑的重要一環(huán),它不可逆地催化PEP與二氧化碳反應(yīng)生成草酰乙酸,回補TCA循環(huán)。因此該基因的缺失一定程度上影響了菌體生理,使得糖耗減慢。 本論文在1L罐上對DN8/pB進行了發(fā)酵優(yōu)化,最終在37℃、高溶氧條件下(4vvm),發(fā)酵52h積累Ne
6、uAc4.15g/L。但在5L罐發(fā)酵時菌株生長很差、產(chǎn)量很低,說明發(fā)酵條件需要進一步優(yōu)化。 微生物利用簡單底物生產(chǎn)小分子化合物的能力是十分驚人的,但是由于生理代謝的復(fù)雜性,理性改造常常收效甚微。從這個意義上,隨機突變加高通量篩選策略有其獨特優(yōu)勢。但是,突變體的表征卻成為新的限制性因素,因為合成的大多數(shù)小分子不會賦予生產(chǎn)菌株易于篩選的表型。生物傳感器的應(yīng)用在很大程度上解決了這一問題。它們能夠感應(yīng)胞內(nèi)代謝物的濃度變化,并通過報告基
7、因以熒光、酶活或者偶聯(lián)細胞生長的方式起到高通量篩選的作用,對微生物代謝途徑改造和菌株進化研究意義重大。2013年,Cho等人利用SELEX方法篩選到了NeuAc特異性的RNA適配子,為NeuAc生物傳感器的開發(fā)奠定了基礎(chǔ)。 通過將該適配體酶與組成型強啟動子PJ23106、緩沖序列、報告基因相連,本論文構(gòu)建了NeuAc特異性的RNA傳感器。當胞內(nèi)NeuAc結(jié)合在RNA適配子之后引起整個開關(guān)的構(gòu)象變化,導(dǎo)致錘頭型核酶發(fā)生自剪切,產(chǎn)
8、生一個缺口,暴露出新的5’羥基并在大腸桿菌內(nèi)源RNase J1核酸酶的作用下,由5’→3’方向?qū)RNA進行剪切,從而降低下游報告基因的豐度。 以sfgfp為報告基因時,12mM的外源NeuAc造成高達11.8倍的熒光抑制,證明外源添加NeuAc的量可以與報告基因gfp的表達偶聯(lián)。之后本論文用tetA代替gfp建立了基于Ni2+的高通量篩選系統(tǒng)。TetA編碼一個四環(huán)素/H+轉(zhuǎn)運蛋白并且可以用作雙向篩選標記。TetA的表達賦予細
9、胞四環(huán)素抗性,同時使細胞對毒性金屬離子如NiCl2更敏感。細胞內(nèi)NeuAc濃度的增加將激活適配體酶的自剪切進而降低TetA的表達,減少Ni2+的泵入,因此具有更高胞內(nèi)NeuAc濃度的細胞在NiCl2條件下更具有生長優(yōu)勢。 為了使培養(yǎng)基的干擾最小化,本論文采用了成分較為簡單的M9B基本培養(yǎng)基。在預(yù)實驗中,本論文確定了該培養(yǎng)基中Ni2+的最佳篩選濃度為50μM,在該濃度下,TetA過表達造成的生長抑制最明顯。在0-86.4±5.1
10、mg/g cdw胞內(nèi)NeuAc范圍內(nèi),50μM Ni2+條件下,細菌生長與胞內(nèi)NeuAc濃度成正比。本論文還發(fā)現(xiàn),構(gòu)建的NeuAc傳感器在乳酸菌中同樣有活性,在0-25.6mM外源NeuAc范圍內(nèi),傳感器工作良好,這也說明在不同的物種間核酶的工作機制十分相似,暗示基于RNA的傳感器可能具有更好的種間適應(yīng)性。 隨后本論文進行了模擬篩選以驗證篩選系統(tǒng)的可用性。本論文構(gòu)建了NeuAc高產(chǎn)菌株DN5/pB與原始菌株DN5/pNnsGM
11、(1∶100)混合的模型文庫。在篩選壓力下,僅通過一輪篩選,DN5/pB富集超過16倍,證明了該系統(tǒng)可以用于菌株進化。本論文嘗試在質(zhì)粒pB的基礎(chǔ)上通過優(yōu)化NeuAc合成途徑中四個基因的表達來提高NeuAc生產(chǎn)。本論文設(shè)計了兩種RBS文庫,分別包含497,664和65,536種突變體,經(jīng)過初步表征,來自文庫一的菌株積累NeuAc能力更強,所以在接下來的實驗中采用了文庫一。 將文庫在篩選培養(yǎng)基中培養(yǎng),當細胞達到指數(shù)后期時,將培養(yǎng)物
12、按1%轉(zhuǎn)接到新鮮的篩選培養(yǎng)基中。在三次連續(xù)傳代(稱為一個富集循環(huán))后,提取質(zhì)粒并重新轉(zhuǎn)化新鮮親本菌株以防止細胞產(chǎn)生對鎳離子的適應(yīng)性突變。通過3輪篩選進化,富集到3個高產(chǎn)質(zhì)粒p1e、p2、p3e,富集率超過40%。富集質(zhì)粒中,neuB、slr1975、GNA1三個基因的表達強度較pB高(除了p2e-GNA1),但glmS強度較低。其中產(chǎn)量最高的DN5/p2e較原始菌株NeuAc產(chǎn)量提高了34%,達到2.12g/L。在此基礎(chǔ)上本論文對Neu
13、Ac合酶NeuB進行了隨機突變,經(jīng)過4輪篩選進化,富集了B1、B3兩個突變體,富集率分別為56.5%和45%。DN5/pB1產(chǎn)量為2.24g/L,DN5/pB3產(chǎn)量為2.61g/L(相比DN5/p2e提高了23%)。本論文將NeuB突變體進行了蛋白表達純化并對其酶活進行了測定,B3較野生型提高了27%,B1較野生型提高了9.4%。 為探究單個氨基酸突變及組合的氨基酸突變對酶活及NeuAc生產(chǎn)的影響,本論文構(gòu)建了C1,C2和C3
14、突變體。但遺憾的是,未能進一步提高NeuAc產(chǎn)量。為衡量DN5/pB3生產(chǎn)NeuAc的能力,本論文采用無機鹽培養(yǎng)基進行了雙階段發(fā)酵。在該策略中,要求產(chǎn)物生產(chǎn)與細胞生長不存在偶聯(lián)。第一階段是生物量積累階段,第二階段是將積累的細胞重懸到適當?shù)木彌_液中進行產(chǎn)物生產(chǎn)。經(jīng)44h發(fā)酵,菌株積累8.31g/L NeuAc。副產(chǎn)物方面,丙酮酸和GlcNAc積累量較多,其余如ManNAc、甲酸、乙酸、乙醇較少。通過對發(fā)酵初始生物量的優(yōu)化,NeuAc產(chǎn)量進
15、一步提高到12.52g/L。 本論文采用不可逆的NeuAc合酶進行葡萄糖起始的NeuAc發(fā)酵生產(chǎn),并對宿主菌進行了相應(yīng)的積累PEP的改造,一定程度上提高了NeuAc的產(chǎn)量和產(chǎn)率。通過偶聯(lián)細胞生長的NeuAc高產(chǎn)菌株高通量篩選系統(tǒng)的建立,本論文利用隨機突變對NeuAc生產(chǎn)途徑進行了表達強度優(yōu)化并對關(guān)鍵酶NeuAc合酶進行了突變篩選,進一步提高了菌株的生產(chǎn)能力。該篩選系統(tǒng)還可以應(yīng)用于NeuAc途徑其它酶的篩選,同時也為其它RNA傳
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